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來源: 發布時間:2025-05-27

1983年,外泌體初次于綿羊網織紅細胞中被發現,1987年Johnstone將其命名為“exosome”。多種細胞在正常及病理狀態下均可分泌外泌體。其主要來源于細胞內溶酶體微粒內陷形成的多囊泡體,經多囊泡體外膜與細胞膜融合后釋放到胞外基質中。所有培養的細胞類型均可分泌外泌體,且外泌體天然存在于體液中,包括血液、唾液、尿液、腦脊液和乳汁中。有關他們分泌和攝取及其組成、“運載物”和相應功能的精確分子機制剛剛開始研究。外泌體目前被視為特異性分泌的膜泡,參與細胞間通訊,對外泌體的研究興趣日益增長,無論是研究其功能還是了解如何將其用于微創診斷的開發。外泌體提取:磁珠法具有特異性高、操作簡便、不影響外泌體形態完整等優點。太原外泌體提取試劑推薦廠家

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外泌體在肺病進程中的作用:肺病細胞來源外泌體(LCC-exosome)可以通過刺激一些病癥血管的形成來促進一些病癥的生長。據相關報道稱,LCC-exosome中的miR-210可以通過調節基質細胞中酪氨酸受體激酶A3的含量,促進一些病癥血管的生成;而LCC-exosome中的miR-23a則可以通過啟動脯氨酰羥化酶及壓制緊密結合蛋白ZO-1來促進肺病的生血管作用。此外,有研究發現,外泌體中的內容物可以觸發上皮-間質轉化(EMT)。晚期肺病患者血清中外泌體波形蛋白表達增加,促使人正常支氣管上皮細胞出現EMT,從而使肺支氣管正常上皮細胞出現增殖,遷移能力。色譜法。這種方法分離到的外泌體在電鏡下大小均一,但是需要特殊的設備,應用不普遍。鄭州正規外泌體提取試劑直銷廠家外泌體提取:基于聚合物的沉淀技術。

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外泌體(Exosomes)是細胞分泌到胞外的一種囊泡(ExtracellularVesicles,EVs),其大小為30-150nm,具有雙層膜結構和茶托狀形態,含有豐富的內含物(包括核酸、蛋白和脂質等),參與細胞間的分子傳遞。外泌體普遍存在于細胞培養上清以及各種體液中,包括血液、唾液、尿液、乳汁等,同時也存在于組織樣本中,如腦組織、肌肉組織、脂肪組織等。腦組織分離方法簡述:將腦組織剪成薄片,放入離心管中加上消化液進行消化,經水浴、反復輕輕上下顛倒,再用移液間斷緩慢吹吸至消化結束。隨后加入培養基于消化液中,混勻,置于冰上。再進行一系列的差速超速離心過程,包括除雜、濾膜過濾、超離等。較后用PBS重懸外泌體,用重懸后的外泌體進行下面的透射電鏡(TEM)、納米粒徑追蹤分子(NTA)和markerWB鑒定。

用于外泌體提取的體液收集注意事項:1、抽血技巧。操作要輕柔迅速。試管可翻轉8-10次使樣本與抗凝劑混勻,避免劇烈搖晃。混勻后,將試管固定垂直放置于離心分離器,在頂部記錄抽血的準確時間,因為抽血與離心之間的時間間隔可能是一個影響因素。外泌體在抽血后30分鐘內是比較穩定的,若時間過長將導致外泌體數量增加。血小板極易因抽血時的物理因素而并釋放出外泌體,其中包括接觸、壓力、切力。2、抽血時間。除了血液黏度,體內血液的各項指標在1天中變化很大。生理節律會對血小板的產生很大的影響。白細胞的募集和循環系統中促炎細胞和細胞會隨時間變化。大量的具有特殊表面分子的微粒也被證明會隨時間變化。目前尚無設計較好的實驗對證實不同時間血液中外泌體的變化,故應在相同的時間采集樣本。目前飲食是否會對EV產生影響尚未可知,但是由于脂蛋白可運載RNA且食物的攝取可以影響循環脂蛋白顆粒的類型、數量和作用,故抽血可在較后一次用餐后一段確定的時間進行。來源于細胞內溶酶體微粒內陷形成的多囊泡體,經多囊泡體外膜與細胞膜融合后釋放到胞外基質中。

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外泌體在肺病進程中的作用:在一些病癥微環境中,一些病癥細胞來源的外泌體能夠誘導CD4+T分化為調節性T細胞,壓制機體的抗一些病癥免疫反應;肺病細胞分泌的外泌體含有miR-21和miR-29a,可在免疫細胞中結合并啟動TLR8,使TLR介導的NF-κB信號通路活化,從而導致一些病癥的生長和轉移。在肺病的侵襲和轉移過程中,細胞間通訊扮演著重要的角色。據有關報道稱,NSCLC分泌的外泌體內TGFβ和IL10的高表達與肺病的轉移密切相關。此外,啟動的T細胞可以通過調控Fas信號通路增加基質金屬蛋白酶9(MMP9)的表達,進而促進肺病的轉移。這些機制有望成為肺病治病的潛在靶點。雖然大多數外泌體都是促進一些病癥的侵襲與轉移,但也有報道稱,外泌體miR-302b可以通過壓制TGFβRⅡ來壓制肺病細胞的轉移與增殖。如純度和回收率低,雜蛋白較多(假陽性),顆粒大小不均一,產生難以去除的聚合物。通過離心篩選初步去除體液中的細胞成分和細胞碎片,制成體液樣本備用。唐山正規外泌體提取試劑哪家好

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外泌體的提取、分離方法:梯度密度離心法。研究發現,外泌體的密度在1.1~1.19kg·L-1之間,因此,可以采用密度梯度離心法來分離外泌體。該方法是將超速離心結合蔗糖密度梯度或蔗糖墊結合,原理是先除去非囊泡物質,再通過梯度密度濃縮提取外泌體,該方法可以得到相對較為純凈的外泌體。傳統的梯度密度方法通常需要離心16h,但是2012年,研究者[15]使用了62~90h才分離出某些確切囊泡,因此,該方法可能不足以沉淀所有的外泌體。如果離心時間不充足,污染物質可能和外泌體保持在相同的密度層,特別是這個密度范圍又比較寬。太原外泌體提取試劑推薦廠家

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