RT-PCR逆轉錄中模板的選擇：在RT-PCR實驗中，選擇總RNA或純化的mRNA作為模板進行逆轉錄十分重要。mRNA雖然能提供略高的靈敏度，但總RNA經常使用，具有較mRNA更重要的優勢。首先，其過程需要較少的純化流程，這保證了更好的回收模板和更好的把結果標準化為起始的細胞數。第二，避免mRNA富集步驟，為了避免不同mRNA的回收率而帶來結果偏移的可能性。總之，在大多數的應用中，目標基因的相對定量比檢測的非常靈敏度更重要，因此在多數情況下，總RNA更適用。逆轉錄是許多病毒復制中必不可少的步驟。反轉錄報價

大多數逆轉錄酶都具有多種酶活性，主要包括以下幾種活性。①DNA聚合酶活性；以RNA為模板，催化dNTP聚合成DNA的過程。此酶需要RNA為引物，多為賴氨酸的tRNA，在引物tRNA3'－末端以5'→3'方向合成DNA。反轉錄酶中不具有3'→5'外切酶活性，因此沒有校正功能，所以由反轉錄酶催化合成的DNA出錯率比較高。②RNaseH活性；由反轉錄酶催化合成的cDNA與模板RNA形成的雜交分子，將由RNaseH從RNA5'端水解掉RNA分子。③DNA指導的DNA聚合酶活性；以反轉錄合成的首先條DNA單鏈為模板，以dNTP為底物，再合成第二條DNA分子。廣州加尾法逆轉錄報價逆轉錄技術可以進行從RNA到DNA的轉化，從而保護RNA序列的完整性。

逆轉錄常見問題及解決方法之RNA濃度不高：a)、原始組織樣本或細胞量太少:提高加入量。b)、RNA發生降解:如果使用者確定提取RNA的試劑/器具沒有問題，RNA的降解通常發生在樣品破碎/勻漿階段。有兩個辦法可以徹底抑制內源RNase活性:1.立即加入裂解液并且徹底而迅速地勻漿。這只適合培養細胞及內源RNase含量較低的并且較容易勻漿的組織，2.對于內源RNase含量高或不易勻漿的組織，如肝臟、胰腺、脾臟、肌肉等，或植物組織，需要切成小塊后立即投入液氮冷凍，再按說明進行破碎/勻漿。c)、加入異丙醇后室溫沉淀10min或-20C冰沉淀30min即可，無需過夜沉淀。

反轉錄酶的選擇：反轉錄酶（Reversetranscriptase）又稱逆轉錄酶。是以RNA為模板指導dNTP合成互補DNA（cDNA）的酶。一部分反轉錄酶具有RNA酶活性，能夠在轉錄后降解RNA-DNA雜交鏈中的RNA鏈。如果反轉錄酶沒有Rnase酶活性，可加入RNaseH來獲得更高的qPCR效率。常用的酶包括Money鼠白血病病毒（MMLV）反轉錄酶和禽成髓細胞瘤病毒（AMV）反轉錄酶。依據RT-PCR，理想的狀態下是選擇具有較高熱穩定性的反轉錄酶，cDNA的合成才能在較高的溫度下進行，確保成功轉錄具有較高二級結構的RNA，并確保在整個反應過程中的全部活性，從而得到質量更高的cDNA。逆轉錄PCR反應過程中要注意反應管中溶液面積不宜過高，避免泡沫問題。

逆轉錄實驗的準備工作：1、實驗器具與材料：（1）移液頭：200ul、10ul；（2）吸頭：200ul、20ul；（3）EP管1。5ml、100ul；（4）水浴箱。2、實驗器具的處理與準備，塑料制品：（包括吸頭、EP管等）將塑料制品逐個浸泡于1‰DEPC水中（必要時小頭頭需要用吸管打入DEPC水）37℃過夜，然后送至高壓3次，后在80℃烘烤箱中烘干（或置于37℃中8小時左右烘干），試驗前將頭頭放入吸頭臺。3、試劑配制和準備：（1）DEPC水：泡實驗器具的DEPC水的配制：1000ml雙蒸水中加1mlDEPC，放在1000ml容量瓶中靜置4小時后備用。逆轉錄中所用的DEPC水的配制：100ml鹽水瓶內裝40ml雙蒸水，加40ulDEPC，37℃過夜，送至高壓，后分裝到幾個1。5mlEP管中，-20℃中保存備用。（2）RT中所需要的各種試劑。逆轉錄過程中的缺陷會導致錯誤擴增和偏差。反轉錄報價

逆轉錄實驗相關關器材如逆轉錄儀需經常檢查，以保證反應可靠性。反轉錄報價

RT-PCR逆轉錄引物設計原則：1.上下游引物要保守：擴增子長度需選擇一段保守片段（100-200bp）進行PCR擴增，選擇片段需跨越內含子，因內含子的基因組DNA序列不會被擴增，也可減少從污染的基因組DNA中擴增得到的假陽性風險。引物選取同樣需要保守。2.引物長度和Tm值：引物設計長度為18-25bp，Tm值在50-65℃之間，引物中GC含量在40-60%。設計引物時盡量避免出現4個或超過4個G堿基。RT-PCR實驗陰性對照：反轉錄陰性對照應包括在所有的RT-PCR的實驗中，用來檢測DNA是否污染（如基因組DNA或PCR產物）。該對照所指不加反轉錄酶，通過反轉錄過程得到cDNA在進行熒光定量PCR檢測。如檢測到擴增，則樣本中可能含有基因組DNA污染。反轉錄報價

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