經典的慢病毒載體（LV）的生產工藝如下，——三質粒系統瞬時轉染HEK293細胞系，轉染24小時后LV由轉染陽性細胞生產并排出到培養上清液中；收獲上清培養液后，加入核酸酶去除HCD污染，通過澄清步驟去除大的細胞碎片等雜質；下游純化步驟分離LV載體，純化方法包括切向流過濾TFF、色譜純化及超速離心；純化后的LV病毒顆粒經過無菌過濾，更換到優化后的配方中，灌裝并冷凍保存。每批Car-T生產時取對應量的LV病毒，切忌反復凍融，否則LV病毒會失活。一般來說，生理鹽條件相當于150mM NaCl溶液，而這正是中鹽核酸酶較為適合的條件。南通中鹽核酸酶使用方法

文章作者按照經典的慢病毒載體生產流程操作，在融化、核酸酶消化、澄清、超濾等步驟留樣，分別檢測dsDNA濃度及功能性LV病毒滴度。經過分析發現，——去除主要發生在澄清環節，能去除dsDNA的80%-90%；2. M-SAN HQ中鹽核酸酶比Benzonase能更高效去除dsDNA，即M-SAN HQ組的TFF回流液中dsDNA殘留量是Benzonase組回流液的20%左右；3. LV病毒滴度在澄清環節損失30%-40%；4. M-SAN HQ組的TFF回流液中LV病毒滴度略高于Benzonase組的回流液數據。鹽城70960-001中鹽核酸酶生理鹽濃度下，M-SAN HQ中鹽核酸酶性能優于常用核酸酶。

ArcticZymes廠家對鹽活性核酸酶系列產品（Salt Active Nucleases，SANs）的生產及質控，在符合ISO13485:2016體系基礎上，增加了cGMP質控標準，如microbes、endotoxin、蛋白酶等，符合USP-EP要求。廠家提供HQ級別和GMP級別的SAN HQ高鹽核酸酶和M-SAN HQ中鹽核酸酶，從成本角度分別滿足臨床前和早期臨床階段、商業化大規模生產階段的需求；且GMP級SAN HQ高鹽核酸酶已完成在FDA的藥物主文件（Drug Master File, DMF）申報備案，助力加快藥物申報流程。

逆轉錄病毒載體可以將7.5Kb左右外源基因整合入靶細胞基因組，并穩定持久地表達，已經在批準的CAR-T產品和許多臨床產品中得到應用。Shou個成功的基因藥物臨床試驗是利用小鼠白血病病毒(Murin Leukemia Virus,MLV，gamma逆轉錄病毒)作為基因轉移載體醫治兒童的X性染色體連鎖嚴重聯合免疫缺陷（SCID-X1）。目前上市的6個細胞藥物產品全部采用逆轉錄病毒（3個為gamma逆轉錄病毒載體，3個慢病毒載體）作為基因轉移載體。逆轉錄病毒載體目前常用的主要有兩個：gamma逆轉錄病毒載體(Retroviral vector,RV)和慢病毒載體(Lentivirus vector,LV)。兩種病毒均屬于逆轉錄病毒科，在自身攜帶的逆轉錄酶催化下將其正鏈RNA均逆轉錄為cDNA。病毒顆粒比較大，約為100nm（70-100nm，有的至200nm）,外層為表面突起的脂蛋白套膜，套膜內為20面體的衣殼（capsid）,核衣殼內由一螺旋結構的核酸。致力于從深海microbe中識別新的冷適應酶，用于分子研究、IVD和biopharma領域。

病毒載體作為細胞藥物生產的關鍵原材料，直接關系到細胞產品質量。載體質量的控制和工藝穩定性和批間一致性都是關系到產品能否產業化的關鍵。在生產純化過程中，需要去除上游過程中的培養基成分、誘導劑、宿主蛋白和核酸等雜質，但是由于逆轉錄病毒顆粒比較大，高異質表面糖蛋白，而且活性易于受剪切影響，對下游純化提出了巨大的挑戰。目前病毒載體純化方法包括超速離心、離子交換層析、分子排阻層析、親和層析、滲濾等。各種方法各有利弊，就產業化而言，離子交換純化效果比較好，條件易于摸索，易于規模放大。US FDA指南要求：重組biologics終產品中，核酸雜質含量低于10ng/dose。蕪湖倍篤生物中鹽核酸酶使用方法

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ArcticZymes Technologies于2019年推出了M-SAN HQ中鹽核酸酶，2021年推出對應的M-SAN HQ ELISA kit。該試劑盒原理是采用雙抗夾心法定量檢測各種生物制品的中間品、半成品和成品中M-SAN HQ中鹽核酸酶的殘留含量，特異性的anti-M-SAN作為捕獲抗體偶聯在孔板上，辣根過氧化酶HRP標記anti-M-SAN作為檢測抗體，TMB是檢測反應底物。該試劑盒特異識別M-SAN HQ中鹽核酸酶，對其它核酸酶沒有特異性結合。它的定量范圍是0.12-7.5ng/ml；12*8strips的設計規格，使用靈活，更能降低使用成本。南通中鹽核酸酶使用方法