測定血清中的某些酶，如CK，離體(采集血液)后很容易失活。失活的原因是酶活性中心的活性基因巰基(一SH)被氧化造成的。只有通過適當的還原作用才能重新開始。如CK—NAC檢測試劑盒即含有CK活化劑，名為N一乙酰半胱氨酸。實驗研究證明，NAC對血清中已失活的CK活化過程約需180 S。這就是CK測定為什么要延遲時間較長的理論依據。在AST，ALT采用IFCC推薦方法測定時需要磷酸吡哆醛預活化。需要強調：含有活化劑的生化試劑，其測定酶活性的結果要高些。用pH計測定配制好的鹽溶液的pH值，使其在6.4~7.0之間。明膠水溶液(10%,無菌)

檢測試劑盒實驗如何改進錯誤？查驗技術人員應具有試驗室操作的基本素質和實踐經驗。檢測技術人員能夠嫻熟操作試驗儀器儀表，具有必定的總結和剖析問題的能力，能及時、妥善地解決檢測試劑盒試驗中呈現的意外狀況。洗刷要徹底。洗版不徹底，酶偶聯物的布景色彩為假陽性。此外，清潔劑應該是新鮮的，能夠隨時使用。舊的洗刷劑會添加布景，也可能呈現假陽性。嚴控劑盒試驗反應時間。檢測試劑盒反應時間過長，酶被滅活，反應時間過短，酶與血清中的微生物抗原和抗體不能徹底結合，產物結構松散不穩定，易清洗，易發生假陰性。明膠水溶液(10%,無菌)檢測試劑盒使液體充沛混合均勻，也使其得到充沛的反應。

hochest染色和DAPI染色有什么區別：1、每個染料有自己獨特的激發譜線和發射譜線.這也是以上兩個染料的主要區別. 另外Hoechest 33258 是膜透性的,因此在活細胞時候能輕松進入;DAPI是半透性的,有選擇性的進入.因此Hoechest 33258 一般用來染活細胞,可以長驅直入;DAPI一般是染固定細胞.2、兩者都可以用紫外看，參見以下的激發發射波長Hoechst 33258的較大激發波長為346nm，較大發射波長為460nm；Hoechst 33258和雙鏈DNA結合后，較大激發波長為352nm，較大發射波長為461nm。DAPI的較大激發波長為340nm，較大發射波長為488nm；DAPI和雙鏈DNA結合后，較大激發波長為364nm，較大發射波長為454nm。

用液體試劑時要注意什么？在試管里進行某些實驗時，取試劑不需要準確用量，只要學會估計取用液體的量即可。例如用滴管取用液體，lmL相當多少滴，5mL液體占一個試管容量的幾分之幾等。倒入試管里溶液的量，一般不超過其容積的1/3。定量取用液體時，用量筒或移液管。量筒用于量度一定體積的液體，可根據需要選用不同容量的量筒。量取液體后讀數時，要使視線與量筒內液體的彎月面的低處保持水平，偏高或偏低都會讀不準而造成較大的誤差。磷酸緩沖鹽溶液可調整的適宜pH緩沖作用。

檢測試劑盒實驗注意事項:檢測試劑盒從冷藏環境中取出應在室溫平衡15-30分鐘后方可使用，酶標包被板開封后如未用完，板條應裝入密封袋中保存。濃洗滌液可能會有結晶析出，稀釋時可在水浴中加溫助溶，洗滌時不影響結果。各步加樣均應使用加樣器，并經常校對其準確性，以避免試驗誤差。一次加樣時間建議控制在5分鐘內，如標本數量多，推薦使用排加樣。請每次測定的同時做標準曲線，建議做復孔。如標本中待測物質含量過高（樣本OD值大于標準品孔第yi孔的OD值），請先用樣品稀釋液稀釋一定倍數（n倍）后再測定，計算時請乘以總稀釋倍數（×n×5）。液體試劑分散度大，吸收快。甘油明膠浮載劑

檢測試劑盒操作注意事項：實驗中不用的板條應立即放回包裝袋中，密封保存，以免變質。明膠水溶液(10%,無菌)

檢測試劑盒標本保存方法：標本管中增加物質的影響。抗凝劑、酶抑制劑及快速分別血清的分別膠等均對測定有必定煩擾作用。標本溶血。由于各種人為原因引起的標本溶血，均可因紅細胞破壞溶解時釋放出很多具有過氧化物酶活性的血紅蛋白，在以辣根過氧化物酶為符號的測定中，會導致非特異性顯色，檢測試劑盒煩擾測定作用。為打敗上述煩擾作用，標本搜集時有必要留意避免溶血。標本保存不妥。 在冰箱中保存過久的標本，血清中IgG可聚組成多聚體、AFP可構成二聚體，在間接法測定中會導致本底過深、乃至形成假陽性；標本放置時刻過長（如一日以上），有時抗原或抗體免疫活性削弱，亦可出現假陰性。為打敗上述煩擾，測定的血清標本宜為新鮮搜集；如不能立即測定，5天內測定的血清標本可存放于4℃，1周后測定的血清標本應低溫凍存；凍存后融解的標本，蛋白質部分濃縮，分布不均，應充沛混合后再測定，但混勻時應輕柔，不行激烈振蕩。明膠水溶液(10%,無菌)