細胞凍存和復蘇的原則是：慢凍速融，這樣更加有利于保持細胞的活力。凍存細胞不加任何保護劑，會導致細胞內冰晶的產生，從而使細胞產生內源性的機械損傷，引起細胞內環境滲透壓，PH，電解質等的改變，進而促使細胞死亡。在過去的幾十年中，科研工作者將培養基、血清和DMSO按照一定的比例配制成凍存液，并配合手工使細胞從4℃，-20℃，-80℃到液氮中逐步轉移使其達到“慢凍”的效果。但這種自制的凍存液儲存時間一般比較短，不能滿足時間跨度大的實驗項目的需求。且這樣人力和時間成本大，人手操作的誤差和血清制品的批間差也給實驗結果帶來了不穩定性。細胞凍存液需要現用現配?上海細胞凍存液一次加多少

用以下方法凍存細胞:4℃放置15-30分鐘（一定不能省略該步驟，否則凍存液無法完全滲透過細胞膜進入細胞起保護作用）①緩速降溫方法（以使用需異丙醇的Nalgene程序降溫盒為例，冷凍細胞的過程中可以輔助實現緩慢降溫，以達到近似于1℃/分鐘）：-80℃過夜→液氮長期保存。（不推薦在-80℃長期保存；異丙醇易揮發，并且容易吸收空氣中的水分，建議使用5次后更換）②逐步降溫法：-20℃保存2小時，然后-80℃中保存2小時，隨后可以在-196℃液氮中長期保存。上海細胞凍存液一次加多少加入適量的細胞凍存液，重懸細胞，使細胞濃度達到1～10×106/ml，置于凍存管中密閉。

解凍解凍后，應該立即鋪板在預先包被好的培養皿中。開始之前，提前準備好以下材料：試管，恢復至室溫的培養基，預先包被的培養板，確保整個解凍復蘇程序可以在**短的時間內完成。注意：不要在37°C水浴中加熱培養基。1.在37°C水浴中快速解凍，持續溫和的在水中晃動凍存管，直到剩余少量細胞還處于結冰狀態。2.水浴中取出凍存管，用70%的酒精或異丙醇擦拭除菌。3.用2mL的血清移液管把細胞懸液轉移到一個15mL的錐形試管。注意：用2mL的血清移液管代替1mL的***頭可以減少細胞聚集體的分解。

3、步驟：（1）冷凍前24-48小時更換半量或全量培養基，使細胞處于指數生長期。（2）配制冷凍保存溶液(使用前配制)：另取一離心管，加入培養基、血清，逐滴加入二甲基亞砜（DMSO）至20%濃度，即制成雙倍的凍存液，置于室溫下待用。（3）離心收集培養之細胞，用加血清的培養基重懸起細胞，取少量細胞懸浮液(約0.1ml)計數細胞濃度及凍前存活率。（4）取與細胞懸液等量的凍存液，緩慢逐滴加入細胞懸液，并晃動試管，制成細胞凍存懸液（DMSO***濃度為5～10％），使細胞濃度為1～5×106cells/ml，混合均勻，分裝于已標示完全之冷凍保存管中，1～2ml/vial，并取少量細胞懸浮液作污染檢測。嚴密封口后，注明細胞名稱、代數、日期。然后進行凍存。復蘇細胞應采用快速融化的方法，這樣可以保證細胞外結晶在很短的時間內即融化.

如果將細胞暴露在這樣高溶質的溶液中且時間過長，細胞膜上脂質分子會受到損壞，細胞便發生滲漏，在復溫時，大量水分會因此進入細胞內，造成細胞死亡。這種因保存溶液中溶質濃度升高而導致的細胞損傷稱為溶質損傷或稱溶液損傷。當溫度進一步下降，細胞內外都結冰，產生冰晶損傷。但是如果在溶液中加入冷凍保護劑，則可保護細胞免受溶質損傷和冰晶損傷。因為冷凍保護劑容易同溶液中的水分子結合，從而降低冰點，減少冰晶的形成，并且通過其摩爾濃度降低未結冰溶液中電解質的濃度，使細胞免受溶質損傷，細胞得以在很低溫條件下保存無血清快速細胞凍存液將加有凍存液的細胞混合液分裝至凍存管中;建議沒管1ml或1.5ml.上海無血清細胞凍存液使用方法

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