細胞凍存和復蘇的原則是：慢凍速融，這樣更加有利于保持細胞的活力。凍存細胞不加任何保護劑，會導致細胞內冰晶的產生，從而使細胞產生內源性的機械損傷，引起細胞內環境滲透壓，PH，電解質等的改變，進而促使細胞死亡。在過去的幾十年中，科研工作者將培養基、血清和DMSO按照一定的比例配制成凍存液，并配合手工使細胞從4℃，-20℃，-80℃到液氮中逐步轉移使其達到“慢凍”的效果。但這種自制的凍存液儲存時間一般比較短，不能滿足時間跨度大的實驗項目的需求。且這樣人力和時間成本大，人手操作的誤差和血清制品的批間差也給實驗結果帶來了不穩定性。細胞凍存液配制比例是?江蘇細胞凍存液使用方法
如果將細胞暴露在這樣高溶質的溶液中且時間過長，細胞膜上脂質分子會受到損壞，細胞便發生滲漏，在復溫時，大量水分會因此進入細胞內，造成細胞死亡。這種因保存溶液中溶質濃度升高而導致的細胞損傷稱為溶質損傷或稱溶液損傷。當溫度進一步下降，細胞內外都結冰，產生冰晶損傷。但是如果在溶液中加入冷凍保護劑，則可保護細胞免受溶質損傷和冰晶損傷。因為冷凍保護劑容易同溶液中的水分子結合，從而降低冰點，減少冰晶的形成，并且通過其摩爾濃度降低未結冰溶液中電解質的濃度，使細胞免受溶質損傷，細胞得以在很低溫條件下保存bi細胞凍存液價格“細胞凍存液的細胞存活率和活力高，批次性差異小.
4.逐滴加入5-7mL的預熱的培養基到15mL的離心管中，加入的同時輕輕混勻。5.室溫以300xg離心5分鐘。6.吸出培養基，使細胞沉淀完好無損。使用2mL血清移液管輕輕將細胞沉淀重懸于1mL的培養基中。7.將0.5mL的細胞混合物轉移到含有培養基的預包被的6孔板的培養孔中（例如，每個凍凍管可以鋪板兩個孔）。8.將培養板放入37°C培養箱。快速前后左右的搖晃培養板數次，將細胞聚集體分布均勻。24小時內不要移動培養板。注意：解凍復蘇后如果只能觀察到少數的未分化的集落
冷凍保護劑甘油或二甲基亞砜（DMSO）分子量小、溶解度大、細胞膜通透性好，可以使冰點下降，提高細胞膜對水的通透性，且對細胞無明顯毒性。DMSO能夠快速穿透細胞膜進入細胞，降低冰點、延緩凍存過程，同時提高細胞膜通透性，提高細胞內離子濃度，減少細胞內冰晶的形成，從而減少細胞損傷達到保護細胞的目的。諾為生物所提供的STEMCELLTechnologiescGMP級別、無血清的細胞凍存液可使長期儲存的細胞保持高存活率，可應用于臨床細胞和特殊珍貴細胞的凍存。無血清細胞凍存液說明書.
細胞冷凍的原理：細胞凍存及復蘇的基本原則是慢凍快融，實驗證明這樣可以比較大限度的保存細胞活力。如今細胞凍存多采用甘油或二甲基亞砜作保護劑，這兩種物質能提高細胞膜對水的通透性，加上緩慢冷凍可使細胞內的水分滲出細胞外，減少細胞內冰晶的形成，從而減少由于冰晶形成造成的細胞損傷。復蘇細胞應采用快速融化的方法，這樣可以保證細胞外結晶在很短的時間內即融化，避免由于緩慢融化使水分滲入細胞內形成胞內再結晶對細胞造成損傷。細胞凍存是細胞培養、引種、保種和保證實驗順利進行的重要技術手段。快速細胞凍存液顏色
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3、步驟：（1）冷凍前24-48小時更換半量或全量培養基，使細胞處于指數生長期。（2）配制冷凍保存溶液(使用前配制)：另取一離心管，加入培養基、血清，逐滴加入二甲基亞砜（DMSO）至20%濃度，即制成雙倍的凍存液，置于室溫下待用。（3）離心收集培養之細胞，用加血清的培養基重懸起細胞，取少量細胞懸浮液(約0.1ml)計數細胞濃度及凍前存活率。（4）取與細胞懸液等量的凍存液，緩慢逐滴加入細胞懸液，并晃動試管，制成細胞凍存懸液（DMSO***濃度為5～10％），使細胞濃度為1～5×106cells/ml，混合均勻，分裝于已標示完全之冷凍保存管中，1～2ml/vial，并取少量細胞懸浮液作污染檢測。嚴密封口后，注明細胞名稱、代數、日期。然后進行凍存。江蘇細胞凍存液使用方法
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